IUGR导致的仔猪低初生重及继发的哺乳期高死亡率和全期低生长性能，是养猪业存在的主要问题之一。据统计，受IUGR影响，我国15%~20%的仔猪初生重低于1.1 kg。IUGR仔猪通常伴有出生后肠道功能障碍，从而影响动物出生后的生产潜力。相比于正常仔猪，IUGR仔猪的后期饲料利用效率降低30%，平均出栏时间延长30天，每年给我国养猪生产带来的经济损失达150亿元。因此，改善IUGR仔猪的肠道健康状况对于确保生猪健康养殖十分重要而迫切。研究团队前期发现IUGR所致的肠道发育缺陷可以从新生持续到生长阶段，由氧化应激和细胞凋亡所致的肠道屏障功能损伤是IUGR猪肠道发育缺陷的生物学基础。

QS是原核生物中一种基于分子信号的通讯机制。QS信号分子不仅能够控制微生物群落行为，还可调节宿主细胞的生理状态。研究表明，革兰氏阴性菌通过分泌QS信号分子调节真核细胞的功能，破坏宿主肠道上皮细胞的稳态，最终导致肠上皮屏障功能障碍。研究团队前期发现，以拟杆菌属和梭杆菌属为代表的革兰氏阴性菌是IUGR仔猪肠道中的优势菌群。然而，目前尚不清楚IUGR仔猪肠腔内革兰氏阴性菌的大量繁殖是否增加QS信号分子的分泌？基于此科学问题，通过检测正常和IUGR仔猪粪便中9种典型的革兰氏阴性菌源的QS信号分子浓度发现3OC12-HSL在IUGR仔猪中显著升高；以瘤胃球菌为代表的革兰氏阳性菌在IUGR仔猪肠道中显著降低，且几乎所有的差异瘤胃球菌均与3OC12-HSL浓度呈显著负相关，该结果为IUGR仔猪肠腔内存在革兰氏阴性菌来源的QS信号分子提供了直接证据。

图1 正常和IUGR仔猪粪便中9种典型的革兰氏阴性菌源QS信号分子浓度

研究剖析了微生物QS信号分子3OC12-HSL介导IUGR仔猪肠道屏障功能损伤的分子机制。体外细胞试验结果表明：3OC12-HSL可通过诱导肠上皮细胞氧化应激与凋亡、破坏细胞外基质与紧密连接蛋白，从而影响肠上皮细胞增殖、破坏屏障功能；而抗氧化剂NAC和细胞凋亡抑制剂Z-VAD-FMK可阻止3OC12-HSL对肠上皮屏障的破坏作用，进一步明确了氧化应激与凋亡通路在该过程中的介导作用。基于无菌小鼠体系进一步揭示了3OC12-HSL导致肠道屏障功能损伤的微生物介导机制：3OC12-HSL破坏SPF小鼠肠道上皮屏障，诱导全身炎症反应；将SPF小鼠的粪便微生物移植给无菌小鼠后，无菌小鼠几乎复制了3OC12-HSL处理的SPF小鼠的所有表型；通过微生物组学联合分析发现Elizabethkingia spp.是SPF和无菌小鼠肠道中共同的差异细菌，该研究利用无菌动物模型和粪便微生物移植技术，首次在动物体内证明了QS信号分子3OC12-HSL通过调控特定微生物破坏肠道屏障功能，该研究方法为解析猪功能微生物与宿主互作机制提供了新思路。基于上述研究成果形成了综述性论文，该论文对革兰氏阴性菌QS信号分子在调节宿主细胞功能和肠道健康中的重要性进行了全面的综述，并提出通过阻断QS信号分子发挥其功能的途径来应用于防治人类和动物肠道疾病的可能性。

图2 QS信号分子3OC12-HSL介导肠道屏障功能损伤的分子机制

图3 QS信号分子3OC12-HSL导致肠道屏障功能损伤的微生物介导机制

图4 革兰氏阴性菌QS信号分子对宿主肠道健康的影响

华中农业大学魏泓教授团队长期致力于肠道功能微生物的发掘及利用无菌动物体系对功能微生物进行功能验证。通过整合肠道功能微生物组与无菌动物实验技术，发现了粪菌移植通过调控宿主免疫和肠道屏障功能缓解无菌小鼠结肠炎的敏感性；阐明了益生菌（丁酸梭菌）及其衍生的胞外囊泡通过调节肠道内稳态及肠道菌群以改善急性实验性结肠炎，该研究为以肠道功能微生物为靶点防治炎症性肠道疾病提供了新的见解，并促进了炎症性肠道疾病的新型治疗和预防干预措施的发展。